前 言

  食品中葡萄糖的测定方法,一般采用《国际食糖分析方法统一委员会》规定的“兰━
挨农法”(Lane and Eynon's Method)和“姆松━华尔格法”(Munson and Walker's Met-
hod),即菲林氏溶液氧化还原滴定法。此法虽沿用已久,但测定结果只是近似值。因使用
菲林氏溶液滴定葡萄糖(还原糖)时,其他具有还原能力的单糖会干扰测定结果。本标准采
用的酶━比色法和酶━电极法是在检索了近20年107篇国外文献的基础上,经过反复实验、
验证而制定的。酶━比色法和酶━电极法使用的葡萄糖氧化酶(GOD)具有专一性,只能催
化葡萄糖水溶液中的β─D─葡萄糖起反应(被氧化),因此测定结果是真实值。本标准的
酶━比色法为仲裁法;酶━电极法为快速法。
  本标准的附录A、附录B都是标准的附录。
  本标准由全国食品工业标准化技术委员会提出并归口。
  本标准起草单位:中国农垦北方食品监测中心(酶━比色法);山东省科学院生物研究
所(酶━电极法)。
  本标准经全国食品工业标准化技术委员会秘书处审校。
  本标准主要起草人:张宗城,刘宁,冯德荣,孙士青,宋家华,郝煜。

                 目  次

前言
1 范围 ………………………………………………………………………………………… x
2 酶━━比色法 ……………………………………………………………………………… x
3 酶━━电极法 ……………………………………………………………………………… x
附录A(标准的附录) ………………………………………………………………………… x
附录B(标准的附录) ………………………………………………………………………… x

中华人民共和国国家标准

食品中葡萄糖的测定方法 GB/T 16285-96
酶-比色法 酶-电极法

Method for determination of glucose in food 
Enzyme-Colorimetric method Enzyme-Electrode method
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1 范围
本标准规定了用酶━比色法和酶━电极法测定食品中葡萄糖的方法,适用于各类食品
中葡萄糖的测定;亦适用于食品中其他组分转化为葡萄糖的测定。
  本标准酶━比色法的最低检出限量为0.01μg(葡萄糖)/mL(试液);酶━电极法的最
低检出限量为1.0mg/100mL。
2 酶━比色法 (略)

3 酶━电极法
3.1 原理
  葡萄糖氧化酶(GOD)在有氧条件下催化β─D─葡萄糖(葡萄糖水溶液状态)氧化,生成
D─葡萄糖酸─δ─内酯和过氧化氢。过氧化氢与过氧化氢型电极接触产生电流。该电流
值与β─D─葡萄糖的浓度呈线性比例,在酶电极葡萄糖分析仪上直接显示葡萄糖含量。
GOD
        C6H12O6 + O2 ─→ C6H10O6 + H2O2
3.2 试剂
3.2.1 组合试剂盒
a 葡萄糖氧化酶酶膜圈:含葡萄糖氧化酶(GOD)15U(活力单位);须在0~4℃左右保存,
有效期12个月。
  b 复合试剂:含磷酸二氢钾、磷酸氢二钠、乙二胺四乙酸二钠、氯化钠、苯甲酸钠、 
庆大霉素硫酸盐;常温保存,有效期24个月。
c β─D─葡萄糖标准溶液:浓度100.0mg/100mL;密封保存,有效期12个月。
3.2.2 缓冲溶液
将一袋复合试剂(3.2.1b)溶解在1000mL蒸馏水中,摇匀。pH=7.2±0.1。
3.3 仪器和设备
  实验室常规仪器及下列各项:
3.3.1 研钵或粉碎机。
3.3.2 分析筛。
3.3.3 组织捣碎机。
3.3.4 酶电极葡萄糖分析仪 :直接读数式 ;测量范围0~100.0mg/100mL (β─D─葡萄
糖);测量精度±1.0mg/100mL(β─D─葡萄糖)。
3.3.5 微量进样器:容量50μL,精度1μL。
3.4 试样的制备
3.4.1 固体样品
粉末状样品:取有代表性的样品至少200g,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。
  颗粒状样品:取有代表性的样品至少200g,用粉碎机粉碎,或用研钵研细,通过100
目分析筛,置于密闭的玻璃容器内。
  新鲜水果、蔬菜等固体样品:取有代表性的可食部分至少200g,置于密闭的玻璃容器
内。
3.4.2 糊状样品
取有代表性的样品至少200g,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。
3.4.3 固液体样品
取有代表性的样品至少200g,用组织捣碎机捣碎,置于密闭的玻璃容器内。
3.4.4 液体样品
取有代表性的样品至少200mL,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。如样品中含有二
氧化碳, 须用三角瓶取200mL,摇至基本无气泡,安装冷凝管,置沸水浴中加热10min,
取出冷却至室温。
3.5 试液的制备
3.5.1 固体试样和固液体试样
  一般固体试样和固液体试样:称取试样(3.4) 1~10g(使之定容后葡萄糖含量为1~200
mg/mL) 于100mL烧杯内,精确至0.0001g,用蒸馏水移入100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇
匀,放置30min(摇动2~3次)。用快速滤纸或脱脂棉过滤。弃去最初滤液,收集1~2mL滤液
于带盖小试管中。
  水果、蔬菜试样:称取试样(3.4) 1~10g于100mL烧杯内(使之定容后葡萄糖含量为1~
200mg/mL),精确至0.0001g。加入煮沸的蒸馏水30~50mL和5mL缓冲溶液(3.2.2),继续煮
沸3~5min,冷却至室温后用研钵研细或用组织捣碎机捣碎。用蒸馏水移入100mL容量瓶中,
稀释至刻度,摇匀。 用快速滤纸或脱脂棉过滤。弃去最初滤液,收集1~2mL滤液于带盖小
试管中。
  食用葡萄糖试样:称取试样(3.4) 1~10g于100mL烧杯内,精确至0.0001g。加入约50mL
蒸馏水,溶解后煮沸2min。冷却后用蒸馏水移入1000mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。
3.5.2 糊状和液体试样
称取试样(3.4) 1~10g(使定容后葡萄糖含量为1~200mg/mL)于100mL烧杯内,精确至
0.0001g。用蒸馏水移入100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。用快速滤纸或脱脂棉过滤(如
溶液呈透明状,可免除过滤)。弃去最初滤液,收集1~2mL滤液于带盖小试管中。
3.6 分析步骤
3.6.1 校正仪器
从组合试剂盒中取出电极,将其表面清理干净,吸取缓冲溶液(3.2.2)滴在电极表面。 
用小镊子取一片酶膜圈,安装在电极表面,使酶膜圈中心和电极中心的白金完全贴紧,形
成无气泡的薄层液体,然后将电极安装在反应池内。
  仪器开机后,缓冲溶液即自动进入反应池,并自行冲洗。当仪器出现进样指令后,用
微量进样器准确吸取25μL标准溶液(3.2.1C),用滤纸擦净针尖外部,将标准溶液注入进样
口内。20~40s后仪器自动显示标准溶液的指示值。再等30~60s,仪器自行完成冲洗过程,
即可重复注入标准溶液(3.2.1C)数次,直至仪器显示允许开始测定样品。当连续两次标准
溶液显示值的相对误差小于2.0%时, 即完成校正步骤。
3.6.2 测定样品
用试液(3.5) 冲洗微量进样器,至少两次。准确吸取25μL试液(3.5),用滤纸擦干针
尖外部,注入进样口。20~40s后读取显示值。
3.7 分析结果的表述
样品中葡萄糖的含量以质量百分率表示,按式(2)计算:
           R×V 3
─────
1000×m 1   R × V 3 
X2 = ──────── × 100 = ───── ………………………(2)
100 1000×m 1 
式中:X2 ── 样品中葡萄糖的含量,质量百分率,%;
R ── 仪器测定值,mg/100mL;
    V3 ── 试液的定容体积,mL;
m1 ── 试样的质量,g。
  计算结果精确至小数点后第1位。
3.8 允许差
同一样品的两次测定值之差:
样品中葡萄糖含量小于1.0%时,不得超过两次测定平均值的5.0%;
  样品中葡萄糖含量大于或等于1.0%时,不得超过两次测定平均值的2.0%。

附录 A (标准的附录) 

葡萄糖氧化酶、过氧化物酶的技术要求、试验方法及判定规则
A1 技术要求
A1.1 酶活力
葡萄糖氧化酶活力(U/mg) ≥ 20;
过氧化物酶活力(U/mg) ≥ 50。
A1.2 干扰酶
葡萄糖氧化酶、过氧化物酶中都不得含有纤维素酶、淀粉葡萄糖苷酶、β ─ 果糖苷
酶、半乳糖苷酶和过氧化氢酶。
A2 试验方法
用移液管吸取0.50mL葡萄糖标准溶液(2.2.6),置于10mL比色管中,加入100μg可溶性
淀粉(HGB3095,分析纯)、100μg纤维二糖 (生化试剂) 、100μg乳糖(HG 3 ─ 1000,分
析纯)和100μg蔗糖(HG3─1001,分析纯),再加入3mL酶试剂溶液(2.2.2)。以下按2.6.1步
骤操作。
  测定吸光度后,在标准曲线(按2.6.1)上查出对应的葡萄糖含量,按下式计算葡萄糖的
回收率:
         C
F = ─────×100
 0.5×200
式中: F ━━ 葡萄糖的回收率,%;
C ━━ 葡萄糖的实测值,μg。
A3 判定规则
测得葡萄糖的回收率,如在 95% ~ 105%范围内,则判定葡萄糖氧化酶和过氧化物
酶符合要求。

附录 B (标准的附录)

葡萄糖氧化酶酶膜圈性能判定方法
B1 酶膜活性的判定
校正仪器时,注入25μL标准溶液(3.2.1C),仪器显示标准溶液的指示值后, 按下酶
膜响应键,则显示出酶膜活性相对值。如相对值大于10.0,则表示酶膜活性符合要求;相对
值小于10.0时,应更换新酶膜。
B2 酶膜线性的判定
校正仪器操作步骤完成后,仪器显示酶膜线性检查指令。用微量进样器注入50μL标准
溶液(3.2.1C),如显示值大于184.0,表示酶膜线性良好;小于184.0时,应按下仪器线性
校正键,进行线性校正,或更换新酶膜。
B3 酶膜抗干扰性的判定
校正仪器操作步骤完成后,用微量进样器吸取25μL新配制的1%亚铁氰化钾溶液,注
入反应池进样口。当仪器显示值为-2.0~+6.0时,表示酶膜抗干扰符合要求;否则应更
换新酶膜。
1%亚铁氰化钾溶液的配制:用100mL烧杯准确称取1.15g亚铁氰化钾[K4Fe(CN)6·3H2O,
GB1273,分析纯],加入少量蒸馏水使之溶解,转移至100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。


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国家技术监督局1996-04-10批准               1996-12-01实施